如何科学认识猪繁殖与呼吸综合征
3.2典型症状 3.2.1母猪便秘加重 母猪便秘现象每个猪场都很难避免,然而,大多数管理人员会凭传统经验认为这是由于日粮粗纤维不足所致,并往往会将增加日粮中麸皮用量作为解决问题的主要措施,结果却往往难以如愿。 诚然,造成母猪便秘的因素很多,其中危害最大,又最容易被管理人员忽视的是病原感染,PRRSV感染加重母猪便秘的情况极少引起人们的注意。无论是怀孕阶段还是哺乳阶段,PRRSV感染导致便秘加重造成的恶果令人吃惊。 3.2.2眼险水肿 母猪感染了PRRSV,通过垂直及水平传播,使仔猪在产房便表现眼险水肿的症状。转入保育舍后症状进一步加重,感染严重的猪只到生长舍后更发展成“水泡眼”或“河马眼”状的肿胀状态。此种症状一年四季都会发生,在空气不畅或空气质量欠佳的猪舍情况更为严重。 3.2.3泪斑及眼结膜炎(俗称红眼病) 猪场管理人员及大多数专家往往会把泪斑症状归为萎缩性鼻炎的标志,然而,很少有人留意到感染PRRSV后,保育舍小猪转入生长舍后相当部分感染猪只出现渐进性眼结膜炎(俗称“红眼病”),如无有效措施,到上市屠宰亦不会好转。不少临床兽医往往会把此种眼结膜炎视为衣原体感染症状,这是一个极大的误区。 上述感染PRRSV的各种典型症状,几乎在任何猪场都可以见到,只是症状表现程度有所不同,这样的猪群其整体免疫状况处于一个十分敏感的边缘水平,多种疫苗接种后抗体水平仍然较低,有的猪群甚至接种多倍量猪瘟疫苗三周后亦检测不出抗体。处于此种状态的猪群如无恶性诱因(如在流感病毒感染)导入,猪群会在离品种/品系所能达到的生产性能较远的低水平上“正常”运行,一旦导入诱因,则随时可能发生“多米诺骨牌”效应,造成无法挽回的损失。 4病理变化 PRRS的病理变化,最常见的是局限性间质性肺炎,随着感染时间延长,可波及肺的各肺叶。小猪还可见胸腔积清亮液体,肾周围脂肪、皮下、肠系膜淋巴结水肿。组织学检查可见肺泡壁增厚,有单核细胞及巨噬细胞浸润,肺泡上皮细胞变性,肺泡腔内有蛋白碎片物,较多的肺泡巨噬细胞被破坏,肺泡巨噬细胞的减少和肺泡功能下降,使猪只更易继发感染。 其他组织器官如鼻、淋巴结、脾、心肌、脑、肝、肾也有不同程度的组织学变化。 5诊断 根据母猪发生流产、死胎、木乃伊胎等,新生仔猪大量死亡,而育肥猪症状不明显,有部分猪耳朵、四肢末端发绀等即可做出初步诊断。一般简易的临床诊断方法有三项指标:①2%以上的胎儿死亡;②8%以上的母猪流产;③断奶前26%以上的仔猪死亡。若其中有两项符合则临床诊断成立。但该诊断方法仅适用于急性发病的猪场,对于慢性型和亚临床型的诊断无效。确认本病需进行病毒的分离鉴定和血清学方法检测等。PCR法能快速准确地检出血 清、细胞培养物和精液中的病毒,目前已应用于本病的兽医临床诊断中。 6鉴别诊断 主要注意和猪流感、猪细小病毒感染、猪流行性腹泻、猪伪狂犬病、猪瘟、猪圆环病毒感染和猪乙型脑炎、猪呼吸道冠状病毒病、猪脑心肌炎,其他细菌性疾病等能表现出繁殖障碍和呼吸道症状的疾病相区分。 7防制措施 7.1平时的预防措施 7.1.1坚持自繁自养的原则 坚持自繁自养,减少健康猪同病猪接触机会,因生产需要从外地引种时,应严格检疫,杜绝将带毒猪引入易感猪群。同时配合严格的卫生消毒措施,可以建立一个完全没有PRRSV感染的猪群。但这种做法在本病流行地区具有一定的危险性,当猪群因为没有受到感染(野毒或疫苗毒)产生的中和抗体的保护时,暴发本病往往是急性型,损失也最大。 7.1.2保持严格消毒 对PRRS发病猪场可通过消毒病猪、防止继发感染、清水冲洗、消毒空栏猪舍来控制PRRS。在断奶、育肥猪群中通常有较多数量的病毒存在,尤其应注重这些地方的消毒工作,以免病毒扩散到母猪群中,使得易感猪感染,造成更大的损失。 7.1.3人工自然感染产生免疫力 人工自然感染产生免疫力是让健康猪自然接触病猪的粪便、死胎、木乃伊胎、弱仔的内脏等,使猪体产生免疫力,抵抗PRRS的发生。这个方法除PRRS外还适用于细小病毒病、猪断奶后多系统衰竭综合征、传染性胃肠炎、轮状病毒等肠病毒感染以及大肠杆菌感染所致的猪病。具体做法是:每10头后备母猪或新母猪用一个死胎或一个弱仔的内脏打浆,加适量冷水,拌料喂猪;收集分娩当天所有木乃伊胎盘置于后备母猪或新母猪栏中,让其自然感染;从繁殖母猪群中,每天收集粪便,加水拌料喂猪,每头后备母猪或新母猪每次用粪100~200g,加冷水500毫升,充分混合,拌料喂,配种前1月喂2次,每次喂1周。 7.1.4定期检测,果断淘汰 对重点种猪场而言,定期对种猪进行PRRS血清学检测,一旦发现带毒种猪,应果断淘汰,尤其是种公猪更应如此。 7.1.5及时诊断,坚决隔离 当怀疑有本病发生时,应尽快确诊、隔离并妥善安置病猪,避免其污染环境,同时加强猪场、猪舍和猪群的卫生消毒。 7.2发病时的控制方案 7.2.1群体治疗方案 PRRS发病猪群易继发副猪嗜血杆菌、链球菌、霍乱沙门氏菌、多杀性巴氏杆菌、胸膜肺炎放线杆菌、猪流感病毒、脑心肌炎病毒、伪狂犬病毒等病原微生物感染,从而加重病情,导致死亡,因此控制继发感染非常重要,在饲料中可添加①黄瓦多糖500g/t+l0%氟苯尼考400g/t,连续饲喂7d;②40%林可霉素400g/t+l0%氟苯尼考400g/t,连喂7d。 7.2.2加强消毒 及时清洗和消毒猪舍及环境,保持猪舍、饲养管理用具及环境的清洁卫生。特别是流产后的胎衣、死胎及死猪,要严格做好无害化处理,产房要彻底消毒。 7.2.3其它措施 改善饲养管理,精心护理,降低死亡,减少经济损失。①确保弱仔猪吸人足够的初乳;②补充维生素E和微量元素确等;③对仔猪推迟补铁、切犬齿、阉割及断尾时间,尽量减少应激因素,体弱者不宜进行;④改善猪舍通风和采光,减少猪群密度;⑤推迟母猪配种时间,21d内不配种;⑥病公猪的精子数量和质量下降,要加强人工授精工作。 7.2.4个体治疗方案 ①对于体温升高的病猪。可以使用30%安乃近注射液0.2mL/kg体重,地塞米松0.2mg/kg体重,青霉素10万Iu/kg体重,链霉素10mg/kg体重,肌注,每日2次,连用3~5d;或者黄芪多糖O.1mL/kg体重,头孢氨苄20mg/kg体重,分点肌注,每天一次,连用3~5d。②对于食欲不振的病猪。使用胃复安1mg/kg体重或维生素B10.2mL/kg体重,一次肌注,每天一次;对于食欲废绝但呼吸正常的病猪,可以使用5%葡萄糖盐水500mL、病毒唑20mL、维生素VCO.O1mL/kg体重,加入头孢氨苄20mglkg体重,混合注射,另外肌注维生素B10.2mL/kg体重。③对于产后无乳的母猪。选用林可霉素10mg/kg体重、5%葡萄糖盐水500mL~1000mL静脉注射,同时注射催产素20万IU~30万IU/支。④对于继发支原体肺炎的仔猪。可使用肌肉注射壮观霉素或利高霉素15mg/kg体重,每日2次,连用3~5d;或氟苯尼考20mg/kg体重,每日2次,连用3~5d。⑤对于继发胸膜肺炎的仔猪。可采用肌肉注射头孢噻呋10mg/kg体重,每天2次,连用3 - 5do 8讨论 8.1诊断方法的问题 PRRS是全球养猪业的难题之一,而近年来,我国养猪业界上至主流派顶级专家,下至猪场“乡间兽医”,凡见“肢端发绀”、“全身潮红”、“高热不退”、母猪不规则流产等临床症状者概称为“蓝耳病”,值得业界同仁深思。 8.2 PRRS的免疫防控问题 ①从理论上说,使用灭活疫苗的确没有太多安全性隐患,至少不存在散毒的危险,但灭活疫苗只能刺激产生较弱免疫反应。体液免疫虽然能提供一定的保护力,但要清除巨噬细胞内的PRRSV,也只能隔靴挠痒。抗体在猪体内有一个消长的过程,当抗体水平降至较低水平时,由于抗体依赖性增强作用,可能导致PRRSV在猪体内持续存在,造成长时间的病毒血症;②PRRSV弱毒疫苗的安全性令人担忧,国际上已有应用疫苗引起发病的证据(杨汉春,2005)。PRRS疫苗毒可以在同群猪中相互传播,并且不能完全阻止强毒的潜伏感染(蔡雪辉,2004)。由于PRRSV分离株之间存在着广泛的抗原多样性,根据某一PRRSV分离株制备的疫苗是不可能有效地保护猪群对抗具有抗原差异的PRRSV野毒株的感染的(崔尚金,2005)。因此不能指望疫苗来控制PRRSV(杨汉春,2005)。 8.3 PRRS与呼吸道疾病综合征(PRDC)的关系 大多数PRDC病例中,PRRS通常发生在较年轻的猪。PRRS可破坏巨噬细胞(巨噬细胞的作用是吞噬和破坏病原微生物,肺部长期接触外界环境空气中的病原菌,因此它在肺部免疫方面发挥重要作用),感染PRRSV后,可杀死肺部40%~50%巨噬细胞。因此,使猪容易并发或继发细菌或其他病毒感染,可以说PRRSV是猪呼吸道疾病综合征的诱发因子。 8.4防控策略 对付病毒感染最有效的武器是动物本身的免疫细胞、亚细胞成分及其分泌物。从生物进化角度分析,高等动物就是具有其生存环境的抗病能力一一非特异性主动免疫功能,只是由于生存环境(包括内环境)的恶劣,使其在胚胎期及出生就不断遭受各种病原的入侵,并承受各种有毒成分与应激因子的伤害,使其非特异性主动免疫功能遭受不同程度的损害,抗御病原入侵的能力必然大打折扣。因此,要有效地对付包括PRRSV的病毒感染最有效的措施不是抗生素或化学药物,而是能有效恢复或重构动物非特异性主动免疫功能。
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